注意：尽管本产品含有胍盐类病毒灭活剂，但不能排除离心管外在取样时污染了病毒，因此操作人员必须按处理传染性样品的方法进行相应的防护，必须在合乎国家规定的实验室进行所有操作。本产品具有抑菌性，但不能排除分装到采样管中时不被污染，分装前后需进行适当的灭菌处理。1. 管内装量：1ml（一拖一），3ml（一拖五），5 ml（一拖十）。2. 采样前，在含有病毒保存液的采样管的标签上标注相关样品信息。3. 根据不同的采样要求，用采样拭子在相应的部位和器官采样。具体采样方法如下： a) 鼻拭子：将拭子头轻轻插入鼻道内鼻腭处，停留片刻后缓慢转动退出。 b) 咽拭子：用拭子擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁后退出。 c) 尿道采样：对男性，用拭子插入尿道约 2cm 处旋转，静止数秒后退出。对女性，抹去宫颈口粘液，用拭子插入宫颈管 1-2cm 处后退出。 d) 其他拭子采样：本手册暂不详述。4. 迅速将拭子放入含有病毒保存液的采样管中，将拭子在样品管中旋转 15 秒。5. 将采样拭子在折断处折断，丢弃把柄端，旋紧管盖。6. 新鲜采集的标本应在 4℃-25℃下内运送至实验室，可在常温条件下保存 1 周。7. 用本产品保存的病毒样本无需进行常规的核酸提取操作，可以直接用做 PCR、RT-PCR、qPCR、qRT-PCR、NGS、SNP 扩增的模板，与市面上的核酸扩增试剂兼容。（注：作为直接扩增模板，样本含量不得超过 PCR 反应总体系的 10%，如若是 20μL 的反应体系，样本含量最多添加 2μL。）8. 未用完的部分模板可以放-80℃长期保存。对 DNA 病毒样品，也可以放-20℃。
1. 本试剂仅用于体外诊断，不作其他用途。 2. 开始实验前，应仔细阅读此说明书。 3. 本试剂仅限有专业经验或经专业培训的人员使用。 4. 避免试剂接触眼睛和粘膜，如接触到敏感区域，立即用大量清水冲洗。
预染彩色蛋白Marker (6.5-270kDa)指示蛋白分子量范围为6.5-270kDa。
（注意：以下举例为常规PCR反应体系和反应条件，实际操作中应根据模板、引物结构和目的 片段大小不同进行相应的调整和优化）1. PCR 体系： 推荐体系（50 μl）试剂用量模板 DNA10 × Taq Plus Buffer5 μldNTP Mixture(2.5 mM each)4 μlPrimer 1 (10 μM)2 μlPrimer 2 (10 μM)2 μlTaq Plus DNA Polymerase (2.5 U/μl)0.5 ~ 1 μlddH2OUp to 50 μl（注意：a 引物浓度请以终浓度 0.1-1.0μM 作为设定范围的参考。扩增效率不高的情况下，可提高引物的浓度；发生非特异性反应时，可降低引物浓度，由此优化反应体系。b 镁离子浓度请以 终浓度 1.5-3mM 作为设定范围的参考。可根据不同的引物对和模板来调节镁离子浓度，由此优 化反应体系）2. PCR 程序过程温度时间预变性94℃5 min变性94℃30 sec25~35cycles 退火55-65℃30 sec延伸72℃1kb/30 sec终延伸72℃5 min（注意：a 一般实验中退火温度比扩增引物的熔解温度 Tm 低 5℃，无法得到理想的扩增效率时， 适当降低退火温度；发生非特异性反应时，提高退火温度，由此优化反应条件。b 延伸时间应根 据所扩增片段大小设定，Taq Plus DNA Polymerase 的扩增效率为 1 kb/30 sec。c 可根据扩增产 物的下游应用设定循环数。如果循环次数太少，扩增量不足；如果循环次数太多，错配机率会增 加，非特异性背景严重。所以，在保证产物得率的前提下，应尽量减少循环次数） 3. 结果检测：反应结束后取 5 μl 反应产物，加入适量上样缓冲液后进行琼脂糖凝胶电泳检测
1. 反复冻融易导致抗生素失效，如果每次的使用量很小，可以适当分装后再使用。
应用领域：基因组学,蛋白质组学,细胞组学,免疫检测,代谢组学,生物制药研究与开发以及其他常用的高通量移液过程.