1、如 Buffer GTL 和 Buffer GL 产生沉淀，可在 56℃水浴溶解； 2、 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段小，提取量下降； 3、 所有离心步骤均为台式离心机，室温下操作； 4、 按要求在 Buffer W1 和 Buffer W2 中加入无水乙醇。
1. 如果每次的使用量很小，建议适当分装后再使用。 2. 手上通常有 RNase，必须戴一次性手套操作，以防 RNase 污染。 3. 本产品仅限于专业人员的科学研究用，不得用于临床诊断或治疗，不得用于食品或药 品，不得存放于普通住宅内。 4. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
1. 注意无菌操作，尽量避免污染。 2. 加入 2×HeBS 500ul 到上述含有 DNA 的 500ul 溶液后，应在 1~2min 内加入到细胞中， 时间间隔不宜过久，以免影响转染效果。 3. 转染 12~24h 后，可以加入终浓度为 10mmol/L 的丁酸钠溶液，提高病毒滴度。 4. 收集病毒上清时，可以每 12h 收集一次，但同时应补足培养液，避免病毒滴度明显下 降。 5. 4℃ 500g 离心 5min 收集上清目的在于去除活细胞。 6. 该试剂用于转染时，其转染效率一般在 30~60%之间. 7. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
从冰箱中取出本产品后在常温下放置，每隔 20 分钟轻微晃动以促进均匀解冻，至充 分解冻后可立即使用。解冻后的产品在 4℃保存不可超过一个月。
1. Agarose 的纯度对 DNA 条带的清晰度影响很大，电泳时请使用高质量的 Agarose。 2. 琼脂糖凝胶浓度与与 DNA 片段的分离性能有密切关系，电泳时请使用合适浓 度的凝胶。 3. 及时更换电泳缓冲液并使用新制备的琼脂糖凝胶，以免影响电泳结果。 4. 进行电泳时，彻底的溶解混匀，避免反复冻融和污染。
该产品用于流式细胞分析和细胞培养。 该产品已经通过流式细胞分析测试了在正常人外周血和小鼠脾脏细胞上的应用。