结果分析 1. 如果制作标准曲线，则以阳性对照浓度的 log 值为横轴，以 Ct 值为纵轴，绘制 标准曲线。再以待测样品的 Ct 值从标准曲线上推算出样品 DNA 浓度的 log 值，推算出 其浓度。 2. 如果未制作标准曲线，按照如下标准判定结果： 阳性对照（1×10E5 拷贝/μL）结果：Ct 值 阴性对照结果：Ct 值35 或无 Ct 值，无明显指数增长期和平台期。 样本检测结果：Ct 值35 或无 Ct 值，表明样本中未检测出核桃源性成分，结果为阴性；Ct 值在 33-35 范围，应对样本进行复检，如重复实验结果 Ct 值仍在 33-35 范围，熔解曲线 的峰值与阳性对照相同，则该样本判断为阳性；若不相同，熔解 Tm 值与目的扩增片段 Tm 值相差≥2℃，则为非特异性扩增，该样本判断为阴性。
注意：尽管本产品含有病毒灭活剂，但不能排除离心管外在取样时污染了病毒，因此操作人员必须按处理传染性样品的方法进行相应的防护，必须在合乎国家规定的实验室进行所有操作。本产品具有抑菌性，但不能排除分装到采样管中时不被污染，分装前后建议进行适当的灭菌处理。1. 先将本产品稀释 10 倍，得到 1×保存液。如若需要 10L 的病毒保存液，取 1L 本产品，加入 9L 超纯水充分搅拌混匀即可。2. 稀释好的 1×保存液进行分装，管内装量：3ml（一拖一），6ml（一拖五，一拖十）。3. 采样前，在含有病毒保存液的采样管的标签上标注相关样品信息。4. 根据不同的采样要求，用采样拭子在相应的部位和器官采样。具体采样方法如下： a) 鼻拭子：将拭子头轻轻插入鼻道内鼻腭处，停留片刻后缓慢转动退出。 b) 咽拭子：用拭子擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁后退出。 c) 尿道采样：对男性，用拭子插入尿道约 2cm 处旋转，静止数秒后退出。对女性，抹去宫颈口粘液，用拭子插入宫颈管 1-2cm 处后退出。 d) 其他拭子采样：本手册暂不详述。5. 迅速将拭子放入含有病毒保存液的采样管中，将拭子在样品管中旋转 15 秒。6. 将采样拭子在折断处折断，丢弃把柄端，旋紧管盖。7. 新鲜采集的标本应在 4℃-25℃下 96 小时（4 天）内运送至实验室，未能 96 小时送至实验室的，应置于-70℃或以下保存，DNA 样品也可以放-20℃保存。
1. 本试剂仅用于体外诊断，不作其他用途。 2. 开始实验前，应仔细阅读此说明书。 3. 本试剂仅限有专业经验或经专业培训的人员使用。 4. 避免试剂接触眼睛和粘膜，如接触到敏感区域，立即用大量清水冲洗。
关联产品产品编号产品名称GZ10008PolyproFect Transfection ReagentGZ20003MaxFect lipo 2000 Transfection ReagentGZ40008RNAiMaxFect Transfection ReagentGZ50010293MaxFect Transfection ReagentGZ60010CHOMaxFect Transfection ReagentGZ70010VIRMaxFect Transfection ReagentGZ31985MaxFect 转染专用减血清培养基
（注意：以下举例为常规PCR体系和反应条件，实际操作中应根据模板、引物结构和目的片段大小 不同进行相应的调整和优化） 1. PCR体系 推荐反应体系（20 μl）试剂用量模板 DNAPrimer 1 (10 μM)0.5 μlPrimer 2 (10 μM)0.5 μl2×Pfu PCR MasterMix10 μlddH2OUp to 20 μl（注意：引物浓度请以终浓度 0.1 - 1.0 μM 作为设定范围的参考。扩增效率不高的情况下，可提高引 物的浓度；发生非特异性反应时，可降低引物浓度，由此优化反应体系） 2. PCR 程序过程温度时间预变性94℃2 min变性94℃30 sec25 ~ 35cycles 退火55 ~ 65℃30 sec延伸72℃60 sec/kb最后延伸72℃5 min（注意：a 一般实验中退火温度比扩增引物的熔解温度 Tm 低 5℃，无法得到理想的扩增效率 时，适当降低退火温度；发生非特异性反应时，提高退火温度，由此优化反应条件。b 延伸时间应 根据所扩增片段大小设定，Pfu DNA Polymerase 的扩增效率为1 kb/min。c 可根据扩增产物的下游 应用设定循环数。如果循环次数太少，扩增量不足；如果循环次数太多，错配机率会增加，非特异 性背景严重。所以，在保证产物得率的前提下，应尽量减少循环次数） 3. 结果检测：反应结束后取5 μl反应产物，加入适量上样缓冲液（含染料的不用加）， 然后进行琼脂糖凝胶电泳检测。
应用领域：基因组学,蛋白质组学,细胞组学,免疫检测,代谢组学,生物制药研究与开发以及其他常用的高通量移液过程.