（注意：使用前在 BufferGP1 中加入 β-巯基乙醇，使其终浓度为 0.2%，水浴锅中 65°C 预热） 

1. 取植物新鲜组织约 100 mg 或干组织约 30 mg，加入液氮充分研磨。 

（注意：如果组织为较幼嫩部分，可不用液氮研磨，直接在研钵中加入 700 μl Buffer GP1 和组织一起研磨即可） 

2. 将研磨后的粉末收集到一离心管（自备）中，加入 700 ul 65°C 预热的 Buffer GP1 

（使用前在预热的 Buffer GP1 中加入 β-巯基乙醇，使其终浓度为 0.2%），

迅速颠倒混匀或用 涡旋振荡器充分振荡混匀，然后将离心管置于 65°C 水浴 20 min，期间每隔 3 ~ 5 min 颠倒离心管混匀样品一次。 

（注意：如要去除 RNA，可在上述步骤完成后加入浓度为 100mg/ml 的 RNaseA 4 μl，振荡混匀，室 温处理 5~10min） 

3. 加入 700 μl 氯仿，充分混匀，12,000 rpm 离心 5 min。 

（注意：如果提取的植物材料富含多酚或淀粉，可在第 3 步骤前用酚：氯仿/1：1 进行等体积抽提）

4. 小心将上层水相转入一新的离心管（自备）中，加入 700 μl Buffer GP2，充分混匀。 将混匀后的溶液转入离心吸附柱中，若一次不能转移完成，可分次加入，12,000 rpm 离心 30 sec，弃收集管中废液。 

5. 向吸附柱内加入 500 μl 的 Buffer W1，室温 12,000 rpm 离心 30 sec，弃收集管中废 液。 

（注意：Buffer W1 是浓缩液，按要求加入乙醇，用后及时盖紧，以防乙醇挥发） 

6. 向吸附柱内加入 500 μl 的 Buffer W2，室温 12,000 rpm 离心 30 sec，弃收集管中废 液。 

（注意：Buffer W2 是浓缩液，按要求加入乙醇，用后及时盖紧，以防乙醇挥发） 

7. 重复步骤 7 一次。 8. 室温 12,000 rpm 离心 2 min，甩干吸附柱上的残留液体。 

（注意：此步不能省略，否则残留乙醇会影响基因组 DNA 的后续使用）

9. 将离心吸附柱置于一个新的 1.5 ml 塑料离心管（自备）中，加入 50-100 μl Buffer EB，室温放置 2 min。12,000 rpm 离心 2 min，离心管底溶液即基因组 DNA。 

（注意：为增加洗脱效率，可将洗脱液在 50~60°C 预热。如需使用去离子水洗脱，可用 NaOH 调整 其 pH 值在 7.0~8.5 之间，为了增加 DNA 回收率，可将得到的溶液重新加入到离心管中，室温放置 2min，再次离心收集）